一、引言

毛白楊作為我國(guó)重要的造林樹(shù)種之一，在木材生產(chǎn)、生態(tài)防護(hù)等方面有著廣泛的應(yīng)用。然而，隨著環(huán)境變化和林業(yè)發(fā)展的需求，提高毛白楊的抗逆性和生長(zhǎng)質(zhì)量成為研究的重點(diǎn)。多胺合成途徑在植物的生長(zhǎng)發(fā)育和應(yīng)對(duì)環(huán)境脅迫中起著至關(guān)重要的作用，而 MdSPDS1 基因作為多胺合成途徑中的關(guān)鍵基因，在其他植物中的研究已顯示出其對(duì)植物生理特性的重要影響。在毛白楊中引入 MdSPDS1 基因，有望改變毛白楊的多胺代謝水平，進(jìn)而影響其生長(zhǎng)和抗逆能力。本研究旨在深入探究 MdSPDS1 基因?qū)γ讞钸z傳轉(zhuǎn)化的作用機(jī)制，為毛白楊的遺傳改良提供新的途徑。

二、材料與方法

（一）植物材料

采集健康的毛白楊幼嫩葉片和莖段作為外植體，來(lái)源于生長(zhǎng)良好的毛白楊植株，種植于實(shí)驗(yàn)基地，確保材料的一致性和遺傳穩(wěn)定性。

（二）菌株與載體

大腸桿菌 DH5α 菌株用于基因克隆，農(nóng)桿菌 LBA4404 菌株用于遺傳轉(zhuǎn)化。構(gòu)建含有 MdSPDS1 基因的植物表達(dá)載體，載體帶有合適的啟動(dòng)子（如 CaMV 35S 啟動(dòng)子）和篩選標(biāo)記基因（如卡那霉素抗性基因）。

（三）基因克隆

總 RNA 提取

采用改進(jìn)的 CTAB 法從蘋(píng)果組織（含有 MdSPDS1 基因）中提取總 RNA。將提取的 RNA 用 DNase I 處理以去除殘留的 DNA，然后通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計(jì)檢測(cè) RNA 的質(zhì)量和濃度，確保 RNA 的完整性和純度。

cDNA 合成

使用反轉(zhuǎn)錄試劑盒，以提取的高質(zhì)量 RNA 為模板，合成第一鏈 cDNA。反應(yīng)體系包括 RNA、反轉(zhuǎn)錄引物、dNTPs、反轉(zhuǎn)錄酶等，按照試劑盒說(shuō)明書(shū)在合適的溫度條件下進(jìn)行反應(yīng)。

目的基因擴(kuò)增

根據(jù)已知的 MdSPDS1 基因序列設(shè)計(jì)特異性引物，引物兩端添加合適的酶切位點(diǎn)。以合成的 cDNA 為模板，利用高保真 DNA 聚合酶進(jìn)行 PCR 擴(kuò)增。PCR 反應(yīng)條件為：94℃預(yù)變性 5 分鐘；94℃變性 30 秒，55 - 60℃退火 30 秒，72℃延伸 1 - 2 分鐘（根據(jù)目的基因長(zhǎng)度調(diào)整延伸時(shí)間），共 30 - 35 個(gè)循環(huán)；最后 72℃延伸 10 分鐘。擴(kuò)增產(chǎn)物通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢測(cè)，回收目的條帶。

（四）植物表達(dá)載體構(gòu)建

將回收的 MdSPDS1 基因片段和植物表達(dá)載體分別用相應(yīng)的限制性內(nèi)切酶進(jìn)行雙酶切，酶切產(chǎn)物通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳再次分離，然后使用 DNA 連接酶將目的基因片段與線性化的載體在合適的溫度下連接過(guò)夜。連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化大腸桿菌 DH5α 感受態(tài)細(xì)胞，通過(guò)氨芐青霉素抗性平板篩選陽(yáng)性克隆。提取重組質(zhì)粒，進(jìn)行酶切鑒定和測(cè)序驗(yàn)證，確保目的基因正確插入載體且序列無(wú)誤。

（五）毛白楊遺傳轉(zhuǎn)化

外植體預(yù)處理

將采集的毛白楊幼嫩葉片和莖段用流水沖洗 30 分鐘，然后在 70% 酒精中浸泡 30 - 60 秒，再用含有幾滴吐溫 - 20 的 0.1% 溶液消毒 8 - 10 分鐘，最后用無(wú)菌水沖洗 5 - 6 次，備用。

農(nóng)桿菌介導(dǎo)的轉(zhuǎn)化

將含有重組質(zhì)粒的農(nóng)桿菌 LBA4404 菌株在含有相應(yīng)抗生素的液體培養(yǎng)基中過(guò)夜培養(yǎng)，至對(duì)數(shù)生長(zhǎng)期。取適量菌液離心，用液體共培養(yǎng)培養(yǎng)基重懸農(nóng)桿菌，使菌液 OD600 值在 0.5 - 0.8 之間。將預(yù)處理后的毛白楊外植體放入農(nóng)桿菌菌液中浸泡 10 - 15 分鐘，期間不斷輕輕搖動(dòng)。然后將外植體轉(zhuǎn)移至共培養(yǎng)培養(yǎng)基上，在黑暗條件下共培養(yǎng) 2 - 3 天。

篩選與再生培養(yǎng)

共培養(yǎng)結(jié)束后，將外植體用無(wú)菌水沖洗 3 - 4 次，以去除表面殘留的農(nóng)桿菌。然后將外植體轉(zhuǎn)移至含有卡那霉素（篩選壓力根據(jù)預(yù)實(shí)驗(yàn)確定）和頭孢噻肟鈉（抑制農(nóng)桿菌生長(zhǎng)）的篩選培養(yǎng)基上進(jìn)行篩選培養(yǎng)。每隔 2 - 3 周將外植體轉(zhuǎn)移至新的篩選培養(yǎng)基，直到長(zhǎng)出抗性芽。將抗性芽切下，轉(zhuǎn)移至生根培養(yǎng)基中誘導(dǎo)生根，獲得再生植株。

（六）轉(zhuǎn)基因毛白楊的檢測(cè)

PCR 檢測(cè)

提取轉(zhuǎn)基因毛白楊植株的基因組 DNA，以非轉(zhuǎn)基因毛白楊基因組 DNA 為對(duì)照，利用 MdSPDS1 基因特異性引物進(jìn)行 PCR 檢測(cè)。PCR 反應(yīng)條件和程序與基因克隆中的相同。通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳觀察是否有目的基因條帶，初步判斷植株是否為轉(zhuǎn)基因植株。

Southern 雜交檢測(cè)

對(duì) PCR 檢測(cè)陽(yáng)性的植株進(jìn)一步進(jìn)行 Southern 雜交檢測(cè)。提取基因組 DNA，用合適的限制性內(nèi)切酶進(jìn)行酶切，然后將酶切產(chǎn)物通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳分離，轉(zhuǎn)膜至尼龍膜上。制備 MdSPDS1 基因探針，通過(guò)標(biāo)記（如放射性標(biāo)記或標(biāo)記）后與尼龍膜上的 DNA 進(jìn)行雜交。經(jīng)過(guò)洗膜、顯色等步驟，觀察雜交信號(hào)，確定 MdSPDS1 基因在毛白楊基因組中的拷貝數(shù)。

Northern 雜交檢測(cè)

提取轉(zhuǎn)基因毛白楊和對(duì)照植株的總 RNA，通過(guò)瓊脂糖凝膠電泳分離，轉(zhuǎn)膜至尼龍膜上。制備 MdSPDS1 基因的 RNA 探針，與尼龍膜上的 RNA 進(jìn)行雜交，檢測(cè) MdSPDS1 基因在轉(zhuǎn)基因毛白楊中的轉(zhuǎn)錄水平。

Western 雜交檢測(cè)

提取轉(zhuǎn)基因毛白楊和對(duì)照植株的總蛋白，通過(guò) SDS - PAGE 電泳分離，轉(zhuǎn)膜至 PVDF 膜上。使用 MdSPDS1 基因編碼蛋白的特異性抗體進(jìn)行 Western 雜交檢測(cè)，通過(guò)顯色反應(yīng)觀察蛋白表達(dá)情況，確定 MdSPDS1 基因在轉(zhuǎn)基因毛白楊中的翻譯水平。

（七）生理生化指標(biāo)測(cè)定

多胺含量測(cè)定

采用高效液相色譜法（HPLC）測(cè)定轉(zhuǎn)基因毛白楊和對(duì)照植株不同組織（如葉片、莖、根）中的多胺含量。將植物組織樣品在液氮中研磨成粉末，加入提取液提取多胺，經(jīng)過(guò)衍生化處理后，用 HPLC 進(jìn)行分析，比較轉(zhuǎn)基因植株和對(duì)照植株多胺水平的變化。

生長(zhǎng)指標(biāo)測(cè)定

測(cè)量轉(zhuǎn)基因毛白楊和對(duì)照植株的株高、莖粗、葉面積等生長(zhǎng)指標(biāo)。定期記錄植株的生長(zhǎng)情況，從幼苗期到成熟期進(jìn)行連續(xù)觀察和測(cè)量，分析 MdSPDS1 基因?qū)γ讞钌L(zhǎng)的影響。

抗逆性指標(biāo)測(cè)定

在模擬不同環(huán)境脅迫條件（如干旱、鹽脅迫）下，測(cè)定轉(zhuǎn)基因毛白楊和對(duì)照植株的相關(guān)抗逆性指標(biāo)。例如，在干旱脅迫下，測(cè)定葉片相對(duì)含水量、脯氨酸含量、抗氧化酶活性（如超氧化物歧化酶、過(guò)氧化物酶、過(guò)氧化氫酶）等；在鹽脅迫下，測(cè)定葉片的鈉離子和氯離子含量、膜透性等，評(píng)估 MdSPDS1 基因?qū)γ讞羁鼓婺芰Φ挠绊憽?/p>

三、結(jié)果

（一）基因克隆與載體構(gòu)建

成功從蘋(píng)果組織中克隆出 MdSPDS1 基因，擴(kuò)增產(chǎn)物大小與預(yù)期相符。構(gòu)建的植物表達(dá)載體經(jīng)酶切鑒定和測(cè)序驗(yàn)證，表明 MdSPDS1 基因已正確插入載體。

（二）毛白楊遺傳轉(zhuǎn)化與檢測(cè)

經(jīng)過(guò)農(nóng)桿菌介導(dǎo)的遺傳轉(zhuǎn)化和篩選培養(yǎng)，獲得了一批抗性植株。PCR 檢測(cè)結(jié)果顯示，部分植株擴(kuò)增出目的基因條帶。Southern 雜交檢測(cè)進(jìn)一步確定了 MdSPDS1 基因在轉(zhuǎn)基因毛白楊基因組中的整合情況，包括拷貝數(shù)。Northern 雜交和 Western 雜交結(jié)果表明，MdSPDS1 基因在轉(zhuǎn)基因植株中能夠正常轉(zhuǎn)錄和翻譯。

（三）生理生化指標(biāo)變化

多胺含量

HPLC 分析結(jié)果顯示，轉(zhuǎn)基因毛白楊植株不同組織中的多胺含量與對(duì)照植株相比有顯著變化，表明 MdSPDS1 基因的導(dǎo)入改變了毛白楊的多胺代謝水平。

生長(zhǎng)指標(biāo)

轉(zhuǎn)基因毛白楊在株高、莖粗和葉面積等生長(zhǎng)指標(biāo)上與對(duì)照植株存在差異，整體表現(xiàn)出更好的生長(zhǎng)態(tài)勢(shì)，說(shuō)明 MdSPDS1 基因?qū)γ讞钌L(zhǎng)有促進(jìn)作用。

抗逆性指標(biāo)

在干旱和鹽脅迫條件下，轉(zhuǎn)基因毛白楊的葉片相對(duì)含水量、脯氨酸含量、抗氧化酶活性等抗逆性指標(biāo)表現(xiàn)優(yōu)于對(duì)照植株，葉片的鈉離子和氯離子含量、膜透性等指標(biāo)也顯示出轉(zhuǎn)基因植株具有更強(qiáng)的抗逆能力，表明 MdSPDS1 基因提高了毛白楊的抗逆性。

四、討論

（一）MdSPDS1 基因在毛白楊中的功能

本研究結(jié)果表明，MdSPDS1 基因在毛白楊中能夠正常表達(dá)并發(fā)揮作用。其對(duì)多胺代謝的調(diào)控影響了毛白楊的生長(zhǎng)和抗逆能力。多胺作為一類(lèi)具有廣泛生理功能的小分子物質(zhì)，可能通過(guò)參與細(xì)胞分裂、伸長(zhǎng)、膜穩(wěn)定等過(guò)程來(lái)促進(jìn)毛白楊的生長(zhǎng)。在抗逆方面，多胺可能與抗氧化系統(tǒng)相互作用，調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)的離子平衡和滲透平衡，從而增強(qiáng)毛白楊對(duì)干旱和鹽脅迫的耐受性。

（二）遺傳轉(zhuǎn)化效率及影響因素

在毛白楊遺傳轉(zhuǎn)化過(guò)程中，外植體的類(lèi)型、農(nóng)桿菌菌株、共培養(yǎng)條件等因素都會(huì)影響轉(zhuǎn)化效率。本研究中，幼嫩葉片和莖段作為外植體在合適的共培養(yǎng)條件下獲得了一定的轉(zhuǎn)化效率，但仍有提升空間。進(jìn)一步優(yōu)化這些因素，如篩選更合適的農(nóng)桿菌菌株或改進(jìn)共培養(yǎng)方法，有望提高轉(zhuǎn)化效率，為大規(guī)模的毛白楊遺傳改良提供更好的技術(shù)支持。

（三）與其他基因的相互作用

在毛白楊的生長(zhǎng)發(fā)育和抗逆過(guò)程中，MdSPDS1 基因可能與其他基因存在相互作用。例如，多胺代謝途徑中的其他基因以及與抗逆相關(guān)的信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑中的基因可能共同參與了對(duì)環(huán)境脅迫的響應(yīng)。未來(lái)的研究可以通過(guò)轉(zhuǎn)錄組學(xué)、蛋白質(zhì)組學(xué)等手段深入探究 MdSPDS1 基因與其他基因的互作網(wǎng)絡(luò)，進(jìn)一步揭示其在毛白楊中的作用機(jī)制。

五、結(jié)論

本研究成功將 MdSPDS1 基因?qū)朊讞睿⑼ㄟ^(guò)多種檢測(cè)手段證實(shí)了基因的整合、轉(zhuǎn)錄和翻譯。生理生化指標(biāo)分析表明，MdSPDS1 基因顯著改變了毛白楊的多胺含量，促進(jìn)了毛白楊的生長(zhǎng)并提高了其抗逆能力。這為利用 MdSPDS1 基因進(jìn)行毛白楊的遺傳改良提供了有力的證據(jù)，同時(shí)也為進(jìn)一步研究多胺代謝與植物生長(zhǎng)發(fā)育和抗逆性的關(guān)系提供了新的視角。未來(lái)的研究可在優(yōu)化遺傳轉(zhuǎn)化體系和深入探究基因互作等方面展開(kāi)，以更好地發(fā)揮 MdSPDS1 基因在毛白楊遺傳改良中的潛力。