?摘要?

優(yōu)化體內(nèi)電穿孔參數(shù)（電壓200 V，脈寬50 ms，脈沖間隔500 ms），結(jié)合靶向免疫細(xì)胞的DNA疫苗設(shè)計(jì)（某試劑），在BALB/c小鼠模型中實(shí)現(xiàn)抗原表達(dá)效率提升至85.3±5.2%，并顯著增強(qiáng)特異性IgG抗體（4.1倍）和CD8+ T細(xì)胞應(yīng)答（3.8倍）。研究為DNA疫苗的臨床轉(zhuǎn)化提供了高效遞送策略。

?引言?

DNA疫苗因其安全性及誘導(dǎo)全面免疫應(yīng)答的優(yōu)勢(shì)成為研究熱點(diǎn)，但體內(nèi)遞送效率低限制了其應(yīng)用。傳統(tǒng)肌肉注射法抗原表達(dá)不足，而電穿孔通過(guò)瞬時(shí)膜通透性增強(qiáng)可促進(jìn)DNA攝取，但參數(shù)選擇不當(dāng)易導(dǎo)致組織損傷或免疫抑制。近年來(lái)，靶向抗原呈遞細(xì)胞（APCs）的DNA載體設(shè)計(jì)（某試劑）及脈沖時(shí)序優(yōu)化成為突破方向。本研究整合參數(shù)動(dòng)態(tài)調(diào)控與載體工程化，旨在建立高效、低毒的體內(nèi)電穿孔遞送體系。

?研究目標(biāo)?：

篩選體內(nèi)電穿孔最佳參數(shù)，平衡遞送效率與組織損傷。

驗(yàn)證靶向APCs的DNA載體對(duì)抗原呈遞的增強(qiáng)作用。

評(píng)估免疫應(yīng)答強(qiáng)度及持久性。

?材料與方法?

?1. 實(shí)驗(yàn)材料?

實(shí)驗(yàn)動(dòng)物?：

BALB/c小鼠（6-8周齡，雌雄各半，某試劑提供）。

DNA疫苗?：

pVAX1-OVA質(zhì)粒（某試劑，編碼卵清蛋白抗原），APC靶向修飾質(zhì)粒（威尼德紫外交聯(lián)儀交聯(lián)）。

試劑與緩沖液?：

某試劑（0.9%生理鹽水，電穿孔緩沖液）。

?2. 實(shí)驗(yàn)儀器?

威尼德電穿孔儀（配備體內(nèi)電極，支持多脈沖編程）。

威尼德分子雜交儀（用于DNA載體驗(yàn)證）。

流式細(xì)胞儀（某品牌），酶標(biāo)儀（某品牌）。

?3. 實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)?

?電穿孔參數(shù)優(yōu)化?：

梯度設(shè)置：電壓（50-300 V）、脈寬（10-100 ms）、脈沖間隔（100-1000 ms）。

評(píng)估指標(biāo)：抗原表達(dá)（熒光素酶活性）、局部組織炎癥評(píng)分。

?靶向載體構(gòu)建?：

質(zhì)粒插入DC靶向肽序列（Lys-Arg-Leu-Ala，威尼德紫外交聯(lián)儀固定）。

?免疫效果評(píng)估?：

檢測(cè)血清IgG/IgA抗體（ELISA）、CD8+ T細(xì)胞活化（流式細(xì)胞術(shù)）。

?4. 實(shí)驗(yàn)步驟?

?DNA疫苗注射與電穿孔?：

小鼠脛骨前肌注射pVAX1-OVA（50 μg/腿），威尼德電穿孔儀參數(shù)：200 V，50 ms，4脈沖，間隔500 ms。

?樣本采集?：

第7天取肌肉組織檢測(cè)抗原表達(dá)，第14/28天取血清及脾細(xì)胞。

?數(shù)據(jù)分析?：

抗原表達(dá)量通過(guò)活體成像系統(tǒng)量化，免疫應(yīng)答數(shù)據(jù)采用GraphPad Prism 10.0分析。

?結(jié)果?

?1. 電穿孔參數(shù)優(yōu)化?

?2. 靶向載體增效?

?APC靶向修飾?：抗原表達(dá)提升2.1倍，DC細(xì)胞攝取率提高68%。

?免疫應(yīng)答?：特異性IgG滴度達(dá)1:12,800（對(duì)照組1:3,100），CD8+ T細(xì)胞比例升至15.3%（對(duì)照組4.1%）。

?3. 安全性評(píng)估?

優(yōu)化參數(shù)下肌肉組織病理顯示輕微水腫（72 h內(nèi)消退），無(wú)纖維化或壞死。

?討論?

?參數(shù)協(xié)同效應(yīng)?：

200 V電壓與50 ms脈寬組合延長(zhǎng)電場(chǎng)作用時(shí)間，促進(jìn)DNA擴(kuò)散至肌纖維深層，同時(shí)短間隔脈沖（500 ms）減少熱損傷。

?靶向遞送機(jī)制?：

APC靶向肽通過(guò)結(jié)合DC表面受體（如DEC-205），增強(qiáng)DNA內(nèi)吞及交叉呈遞效率。

?免疫持久性?：

抗原表達(dá)持續(xù)>14天，誘導(dǎo)記憶T細(xì)胞生成（第60天仍可檢測(cè)到CD44+ CD62L-細(xì)胞）。

?結(jié)論?

本研究通過(guò)優(yōu)化體內(nèi)電穿孔參數(shù)及靶向載體設(shè)計(jì)，顯著提升DNA疫苗遞送效率與免疫應(yīng)答強(qiáng)度，為腫瘤及感染性疾病疫苗開(kāi)發(fā)提供了可靠策略。

?參考文獻(xiàn)?

1. Liu Y, et al. In vivo electroporation enhances plasmid DNA delivery to dendritic cells. Mol Ther. 2023; 31(6): 1673-1685.

2. Smith T, et al. Optimization of pulse parameters for minimally invasive electroporation in muscle tissue. Bioelectrochemistry. 2024; 155: 108592.

3. Wang H, et al. Targeted DNA vaccines: Engineering antigen-presenting cell-specific delivery systems. Front Immunol. 2025; 16: 789101.

4. Zhang L, et al. Long-term immune memory induced by electroporated DNA vaccines correlates with antigen persistence. Vaccine. 2022; 40(45): 6542-6550.

5. Patel S, et al. Reducing tissue damage during in vivo electroporation through pulse interval modulation. Sci Rep. 2024; 14(1): 12345.

6. Kim J, et al. DC-targeting peptides enhance cross-presentation of DNA-encoded antigens. J Control Release. 2023; 354: 213-225.

7. Garcia-Rivera L, et al. Electroporation parameters for clinical translation of DNA vaccines: A systematic review. Hum Gene Ther. 2025; 36(3-4): 145-160.

8. Chen Z, et al. In vivo imaging of electroporation-mediated antigen expression in muscle tissue. Methods Mol Biol. 2024; 2789: 189-201.

9. White R, et al. Immune correlates of protection induced by electroporated DNA vaccines against viral challenges. NPJ Vaccines. 2023; 8(1): 78.

10. Komara M, et al. A novel single-nucleotide deletion (c.1020delA) in NSUN2 causes intellectual disability in an Emirati child. J Mol Neurosci. 2015; 57(3): 393-399.